OBIETTIVI E CONTENUTI

OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO) E RISULTATI DI APPRENDIMENTO

Acquisire conoscenze e abilità pratiche legate a tecniche di chimica clinica, microbiologia, immunometria, batteriologia, micobatteriologia, istologia e citologia

MODALITA' DIDATTICHE

Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio specialistiche con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.

PROGRAMMA/CONTENUTO

Settore chimica-clinica 70 h:

• Caratteristiche del siero, plasma, anticoagulanti ed esercitazione pratica sul trattamento di tali materiali biologici
• Caratteristiche e funzionamento delle apparecchiature automatizzate per determinazioni di chimica clinica con esercitazione pratica
• Calibrazioni e Verifica quotidiana di qualità (QC)
• Manutenzione ordinaria e straordinaria apparecchiature
• Dimostrazione dei criteri di validazione tecnica dei valori ottenuti, visualizzazione delle carte di controllo di qualità, delle metodiche e della linearità delle reazioni sugli analizzatori

Settore elettroforesi 70 h:

• Esecuzione dell’elettroforesi delle sieroproteine con metodo Capillarys in fase liquida.
• Acquisizione del principio di funzionamento delle apparecchiature, preparazione dei reattivi e controlli di qualità
• Visualizzazione dei tracciati elettroforetici serici, normali e patologici
• Esecuzione dell’elettroforesi zonale delle urine su gel di agarosio
• Preparazione ed utilizzo di tampone e colorante per elettroforesi su gel
• Dimostrazione delle metodiche di immunofissazione serica e/o urinaria
• Dosaggio delle proteine con metodo nefelometrico . Preparazione dei reagenti, calibrazioni,controlli di qualità e validazione dei risultati

Settore immunometria 70 h:

• Conoscenza delle principali ricerche immunometriche
• Acquisizione delle principali tecniche applicate in immunometria
• L’automazione in immunometria, uso di questa nella routine giornaliera
• Importanza dell’accuratezza del dato trattato in funzione del controllo/calibrazione eseguiti  sulle apparecchiature in uso
• Rilevazione e trattamento dei dati ottenuti dalle analisi, gestione autonoma dei risultati con conseguente sviluppo delle metodiche di controllo e/o conferma
• Interpretazione dei dati ottenuti
• L’errore in immunometria: causa, trattamento e rimedio

Settore microbiologia  175 h:

• Acquisizione di tecniche di laboratorio di batteriologia: ambienti, camici, guanti monouso, occhiali e mascherina per manipolazioni particolari
• Contenitori, raccolta , trasporto, accettazione e diritto di rifiuto del campione smistamento del campione
• Terreni di cultura: solidi, liquidi,  arricchiti, selettivi, differenziali
• Protocolli di semina dei materiali
• Interpretazione delle crescite sulle piastre in relazione ai materiali seminati
• Protocolli per identificazione ed antibiogramma
• Morfologia delle colonie e reisolamento su terreni selettivi
• Preparazione dei vetrini e colorazioni: Gram, Ziel Nilsen, Blu di metilene,inchiostro di china
• Identificazione manuali ed automatiche ,significato di bionumero ed index identificazioni sierologiche 
• Antibiogramma manuale  e con l’uso di sistemi automatici, MIC , Etest
• Germi anaerobi: coltura in atmosfera priva di ossigeno, identificazione
• Micologia lieviti e forme miceliali aeree riconoscimento
• Protezione e sicurezza nelle culture per Micobatteri
• Decontaminazione dei campioni e semina in terreni solidi e liquidi
• Tecniche di amplificazione genica

Settore anatomia patologica  175 h:

• Registrazione e schedatura del materiale
• Conservazione e fissazione del materiale
• Campionatura
• Tecniche di inclusione in paraffina
• Tecniche di taglio
• Preparazioni citologiche per citologia esfoliativa
• Preparazioni citologiche di liquidi
• Colorazioni istologiche di base

DOCENTI E COMMISSIONI

Commissione d'esame

SONIA SCHIAVO (Presidente)

NICOLA TRAVERSO (Presidente)

CRISTINA CUSATO

NICOLA NIGRO

ALESSANDRA SIGNORETTI (Presidente e Coordinatore di corso integrato)

LEZIONI

INIZIO LEZIONI

Il percorso di tirocinio pratico ha inizio dopo la fine delle Lezioni del I semestre dal mese Gennaio al mese Febbraio e dopo le lezioni del II semestre dal mese di Aprile-Maggio al mese di Settembre con una pausa nel mese di Agosto

ESAMI

MODALITA' D'ESAME

Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con descrizione delle modalità di svolgimento e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico -diagnostico.

MODALITA' DI ACCERTAMENTO

L'esame ha luogo alla fine dell'espletamento del tirocinio annuale. Lo studente deve dimostrare di aver acquisito gli obiettivi previsti attraverso la simulazione pratica di test di laboratorio

Calendario appelli