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CODICE 70731
ANNO ACCADEMICO 2016/2017
CFU
SETTORE SCIENTIFICO DISCIPLINARE MED/46
LINGUA Italiano
SEDE
PROPEDEUTICITA
Propedeuticità in ingresso
Per sostenere l'esame di questo insegnamento è necessario aver sostenuto i seguenti esami:
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • ANATOMIA-ISTOLOGIA 65456 2015
  • FISIOLOGIA E BIOCHIMICA 66899 2015
  • TIROCINIO I ANNO 87016 2015
Propedeuticità in uscita
Questo insegnamento è propedeutico per gli insegnamenti:
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • TIROCINIO III ANNO 70732
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • FARMACOLOGIA, MALATTIE INFETTIVE E MEDICINA INTERNA 68489
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • ANATOMIA PATOLOGICA E TECNICHE IMMUNOISTOCHIMICHE 68482
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • PRINCIPI DI MANAGEMENT SANITARIO E MEDICINA LEGALE 65554
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • SCIENZE TECNICHE MEDICHE APPLICATE E TECNICHE CROMATOGRAFICHE 73159
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • GENETICA MEDICA E TECNICHE GENETICHE 68493
  • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2015/2016)
  • IMMUNOEMATOLOGIA E MALATTIE DEL SANGUE 68485
MODULI Questo insegnamento è composto da:
MATERIALE DIDATTICO AULAWEB

PRESENTAZIONE

Il percorso di tirocinio del II anno di corso prevede 575 di attività dello studente presso Laboratori di Aziende Ospedaliere o ASL convenzionate con l'Università in settori specialistici della Medicina di Laboratorio al fine di acquisire  competenze con l'attività puramente pratica prevista dal profilo del Tecnico di Laboratorio Biomedico. Il percorso di tirocinio è suddiviso per settori specifici in periodi che prevedono da due a cinque settimane di permanenza.

OBIETTIVI E CONTENUTI

OBIETTIVI FORMATIVI

Acquisire conoscenze e abilità pratiche legate a tecniche di chimica clinica, microbiologia, immunometria, batteriologia, micobatteriologia, istologia e citologia di base.

OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO)

ANATOMIA PATOLOGICA – tecniche istologiche di base

Registrazione e schedatura del materiale

Conservazione e fissazione del materiale

Campionatura

Tecniche di inclusione in paraffina

Tecniche di taglio

Preparazioni citologiche per citologia esfoliativa

Preparazioni citologiche di liquidi

Colorazioni istologiche di base

BATTERIOLOGIA

Nozioni sul sistema informatico gestionale  della microbiologia

Acquisizione di tecniche di laboratorio di batteriologia :

ambienti, camici,guanti monouso, occhiali e mascherina per manipolazioni particolari

Contenitori, raccolta , trasporto, accettazione e diritto di rifiuto del campione smistamento del campione

Terreni di cultura

Solidi, liquidi

Arricchiti, selettivi

Differenziali

Protocolli di semina dei materiali

Interpretazione delle crescite sulle piastre in relazione ai materiali seminati

Protocolli per identificazione ed antibiogramma

Morfologia delle colonie, reisolamento su terreni selettivi

Preparazione dei vetrini e colorazioni: Gram, Ziel Nilsen, Blu di metilene,inchiostro di china

Identificazione manuali ed automatiche ,significato di bionumero ed index identificazioni sierologiche 

Antibiogramma manuale, e con l’uso di sistemi automatici, MIC , Etest

Germi anaerobi: coltura in atmosfera priva di ossigeno, identificazione

Micologia lieviti e forme miceliali aeree riconoscimento

CHIMICA CLINICA

Caratteristiche del siero, plasma, anticoagulanti ed esercitazione pratica sul trattamento di tali materiali biologici

Caratteristiche e funzionamento delle apparecchiature automatizzate per determinazioni di chimica clinica con esercitazione pratica

Calibrazioni e Verifica quotidiana di qualità (QC)

Manutenzione ordinaria e straordinaria apparecchiature

Esame chimico del liquor

Dimostrazione dei criteri di validazione tecnica dei valori ottenuti, visualizzazione delle carte di controllo di qualità, delle metodiche e della linearità delle reazioni sugli analizzatori

Esercitazione sui metodi di pipettamento sia automatico che manuale

Gestione magazzino reagenti e consumabili

Corretto utilizzo dei DPI per la prevenzione degli infortuni derivanti dal trattamento di materiale biologico

ELETTROFORESI

Esecuzione dell’elettroforesi delle sieroproteine con metodo Capillarys in fase liquida.

Acquisizione del principio di funzionamento delle apparecchiature, preparazione dei reattivi e controlli di qualità

Visualizzazione dei tracciati elettroforetici serici, normali e patologici

Esecuzione dell’elettroforesi zonale delle urine su gel di agarosio

Deposizione di campioni di urine su appositi supporti

Preparazione ed utilizzo di tampone e colorante per elettroforesi su gel

Dimostrazione delle metodiche di immunofissazione serica e/o urinaria

Dosaggio delle proteine con metodo nefelometrico . Preparazione dei reagenti, calibrazioni,controlli di qualità e validazione dei risultati

Utilizzo del programma di gestione informatica dei campioni

IMMUNOMETRIA

Accettazione, stoccaggio e conservazione dei campioni ( valutazione della loro idoneità, analiti termolabili, tempo critico prelievo- consegna, ecc.)

strumentazione di base automatica e semiautomatica

Allestimento e preparazione Routine quotidiana e straordinaria

Significato dei test eseguiti

Conoscenza delle principali ricerche immunometriche del settore

Acquisizione delle principali tecniche applicate in immunometria

L’automazione in immunometria, uso di questa nella routine giornaliera

Importanza dell’accuratezza del dato trattato in funzione del controllo/calibrazione eseguiti  sulle apparecchiature in uso

Il computer come sistema integrato nell’analisi immunometrica: impostazione, integrazione, gestione e conclusione di un modello automatizzato di routine

Rilevazione e trattamento dei dati ottenuti dalle analisi, gestione autonoma dei risultati con conseguente sviluppo delle metodiche di controllo e/o conferma

Interpretazione dei dati ottenuti alla luce dei diversi test espletati e correlazione con eventuali risultati storicizzati

L’errore in immunometria: causa, trattamento e rimedio

Autoimmunità: celiachia e test allergici

MICOBATTERIOLOGIA (inclusa nel tirocinio Batteriologia

Protezione e sicurezza nelle culture per Micobatteri

Decontaminazione dei campioni e semina in terreni solidi e liquidi

Tecniche di amplificazione genica

Diagnostica delle malattie sessualmente trasmesse : 

                              Myc. H., Ureap. u.

                             Clamidya trachomatis

                              Trichomonas

 

MODALITA' DIDATTICHE

Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio specialistiche con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.

PROGRAMMA/CONTENUTO

Il programma è stato esplicato nella voce "OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO)

DOCENTI E COMMISSIONI

Commissione d'esame

EZIO FULCHERI

ALESSANDRA SIGNORETTI (Presidente e Coordinatore di corso integrato)

LEZIONI

INIZIO LEZIONI

Il percorso di tirocinio pratico ha inizio dopo la fine delle Lezioni del I semestre dal mese Gennaio al mese Febbraio e dopo le lezioni del II semestre dal mese di Aprile-Maggio al mese di Settembre con una pausa nel mese di Agosto

Orari delle lezioni

TIROCINIO II ANNO

ESAMI

MODALITA' D'ESAME

Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con decrizione delle modalità di svolgimento e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico -diagnostico.

MODALITA' DI ACCERTAMENTO

L'esame ha luogo alla fine dell'espletamento del tirocinio annuale. Lo studente deve dimostrare di aver acquisito gli obiettivi previsti.

Calendario appelli

Data appello Orario Luogo Tipologia Note Insegnamento
16/06/2017 13:00 GENOVA Orale
11/07/2017 14:00 GENOVA Orale
21/09/2017 14:00 GENOVA Orale
16/06/2017 13:00 GENOVA Orale
11/07/2017 14:00 GENOVA Orale
21/09/2017 14:00 GENOVA Orale