OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO) E RISULTATI DI APPRENDIMENTO

Gli obiettivi del laboratorio propedeutico sono la preparazione degli studenti con una prima presentazione ed esercitazione sulle materie che verranno approfondite nei vari settori specialistici di laboratorio previsti dal tirocinio annuale. Il Laboratorio Propedeutico del secondo anno di corso di Tecniche di Laboratorio  Biomedico si prefigge di impartire agli studenti alcune nozioni di base oltre che lo svolgimento di alcuni test in autonomia

MODALITA' DIDATTICHE

Frequenza del Laboratorio Didattico con esercitazione interattiva

PROGRAMMA/CONTENUTO

• Introduzione al Settore Elettroforesi e Proteine specifiche: materiali biologici e raccolta; anticoagulanti; trattamento, conservazione e centrifugazione; identificazione dei campioni biologici.
• Allestimento seduta elettroforetica: principio elettroforesi  e metodi; Apparecchiature e accessori (alimentatore,  camera elettroforetica, tampone, colorante,    densitometro); Fasi della corsa elettroforetica (applicazione, migrazione, colorazione, rilevazione).
• Separazione elettroforetica delle proteine: profilo elettroforetico standard; Frazioni (albumina-α1-α2-β1-β2-γ): Proteine specifiche riscontrabili nel tracciato elettroforetico.
• Immunofissazione elettroforetica IFE (gel)
• Ricerca della Proteina di Bence Jones (gel)
• Analizzatori automatici per elettroforesi
• Tecniche analitiche strumentali: spettro fotometria, turbidimetria, nefelometria e potenziometria. Principio: legge di lambert-Beer, applicazione. Calibrazioni. Controllo di qualità interno ed esterno. Interferenze analitiche. Valutazione tecnica di dosaggi in chimica clinica.
• Riconoscimento dei terreni di coltura
• Prova di semina su terreni di coltura
• Riconoscimento delle colonie batteriche sui diversi terreni di coltura
• Svolgimento di alcuni test preliminari di identificazione di colonie batteriche (ossidasi , catalasi ecc)
• Preparazione vetrino per colorazione
• Esecuzione della colorazione di Gram
• Lettura vetrino al microscopio con riconoscimento colonie
• Lettura ed interpretazione di antibiogrammi manuali (kirby Bauer , E test)
• Accettazione dei campioni in anatomia patologica; Idoneità del materiale e fissazione in base alla sua tipologia. Quali contenitori utilizzare, quali strumenti e loro uso corretto
• Riduzione: come preparare il banco per la riduzione. Come eseguire la pulizia e la disinfezione finale. Esercitazioni sulla creazione dei fogli di lavoro e dettatura della macroscopica. Esercitazioni sull’uso e sulla tipologia degli strumenti (bisturi, pinze, ecc). Come e quali biocassette utilizzare; come campionare ‘in toto’ le biopsie (le esercitazioni consisteranno nel far eseguire allo studente prelievi, per  esempio utilizzando materiale di provenienza animale).
• Taglio: il Microtomo. Descrizione e manutenzione ordinaria. Esercitazioni di taglio
• Colorazione (e montaggio dei vetrini): quali strumenti; preparazione delle soluzioni coloranti
• Utilizzo del Microscopio ottico per accertare l’avvenuta colorazione (controlli di qualità interni ed esterni).
• Citologia. Tecniche di allestimento dei materiali citologici. Uso della citocentrifuga