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TIROCINIO III ANNO

CODICE 70732
ANNO ACCADEMICO 2021/2022
CFU
  • 23 cfu al 3° anno di 9293 TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO(L/SNT3) - GENOVA
  • SETTORE SCIENTIFICO DISCIPLINARE MED/46
    LINGUA Italiano
    SEDE
  • GENOVA
  • PROPEDEUTICITA
    Propedeuticità in ingresso
    Per sostenere l’esame di questo insegnamento è necessario aver sostenuto i seguenti esami:
    • TECNICHE DI LABORATORIO BIOMEDICO 9293 (coorte 2019/2020)
    • ANATOMIA-ISTOLOGIA 65456
    • INGLESE SCIENTIFICO 65489
    • FISICA, INFORMATICA, RADIOPROTEZIONE E STATISTICA 65566
    • FISIOLOGIA E BIOCHIMICA 66899
    • PATOLOGIA GENERALE, FISIOPATOLOGIA, IMMUNOLOGIA E PARASSITOLOGIA 68162
    • PATOLOGIA CLINICA E SCIENZE TECNICHE MEDICHE 68676
    • TIROCINIO II ANNO 70731
    • BIOLOGIA E GENETICA 72717
    • TIROCINIO I ANNO 87016
    MODULI Questo insegnamento è composto da:
    MATERIALE DIDATTICO AULAWEB

    PRESENTAZIONE

    Il percorso di tirocinio del III anno di corso prevede 560 di attività dello studente presso Laboratori di Aziende Ospedaliere o ASL convenzionate con l'Università in settori specialistici della Medicina di Laboratorio al fine di acquisire  competenze con l'attività puramente pratica prevista dal profilo del Tecnico di Laboratorio Biomedico. Il percorso di tirocinio è suddiviso per settori specifici in periodi che prevedono da due a cinque settimane di permanenza.

    OBIETTIVI E CONTENUTI

    OBIETTIVI FORMATIVI

    Acquisire conoscenze e abilità pratiche legate a tecniche di biologia molecolare, tecniche immunoematologiche, immunoistochimche, cromatografiche e citofluorimetriche.

    OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO) E RISULTATI DI APPRENDIMENTO

    ANATOMIA PATOLOGICA – tecniche immunoistochimiche

    Cenni su tecniche immunoistochimiche

    Trattamento preparatorio del materiale per esami immuno-istochimici

    Tecniche immunoistochimiche di base (manuali, semi-automatiche e automatiche)

    Principali markers in immuno-istochimica (lettura data-sheet, diluizione ottimale anticorpo nuovo, ecc)

    Utilizzo dei controlli positivo e negativo

    Preparazione tamponi

    Manutenzione e gestione strumenti

    Smaltimento rifiuti

    Immuno-istochimica su materiale citologico

    Allestimento preparati per diagnostica estemporanea- Colorazioni di elezione per esami intraoperatori - Allestimento di citologici per esame intraoperatorio 

    ANATOMIA PATOLOGICA  – tecniche immunocitochimiche

    Cenni su tecniche immunocitochimiche

    Accettazione ed allestimento di campioni per esami immuno-citochimici

    Separazione cellulare su gradiente di densità

    Tecniche di inclusione per materiale citologico

    Tecniche immunocitochimiche di base (manuali, semi-automatiche e automatiche)

    Markers in immuno-citochimica (lettura data-sheet, diluizione ottimale anticorpo nuovo, ecc)

    Utilizzo dei controlli positivo e negativo

    Preparazione tamponi

    Manutenzione e gestione strumenti

    Utilizzo DPI collettivi ed individuali

    Cenni sulle biobanche

    Smaltimento rifiuti

    TECNICHE DI BIOLOGIA MOLECOLARE

    Organizzazione aree e norme comportamentali nel laboratorio di biologia molecolare

    Accettazione stoccaggio e conservazione del campione biologico, programmi di lavoro

    Estrazione acidi nucleici con metodiche manuali ed automatiche in uso nel laboratorio

    Dosaggio e valutazione qualità acidi nucleici

    Tecniche di PCR,

    GEL elettroforesi

    Sequenziamento

    Interpretazione risultati

    Manutenzione e uso  strumenti di laboratorio

    Controlli di qualità CQI e VEQ

    CITOFLUORIMETRIA

    Conoscenza delle basi fisiche e tecnologiche della citometria a flusso:

    • Schema generale di un citofluorimetro (fluidica, ottica, elettronica)
    • Significato dei parametri fisici cellulari valutati in citometria
    • Segnali di fluorescenza
    • Descrizione dei fluoro cromi
    • Operazione di compensazione
    • Significato di analisi multiparametrica
    • Strategia di gating
    • Rappresentazione dei dati

    Tecniche di colorazione diretta e indiretta di campioni biologici

    Principali metodologie applicative per lo studio del fenotipo e delle funzioni linfocitarie, quali produzione di citochine e proliferazione

    HPLC e LC-MS/MS

    Dimostrazione e caratteristiche del funzionamento dei moduli di un HPLC

    Estrazione di un campione su colonna di resina

    La raccolta delle urine delle 24 h acidificate per esami specifici di cromatografia

    Utilizzo delle S.I. in diverse metodiche

    Lettura di un cromatogramma e eventuali modifiche sulla ritenzione dei tempi di uscita dei picchi

    Intervento sul programma di lettura per evidenziare e riconoscere le varie operazioni affinchè venga riconosciuta una sostanza in fase analitica

    Esercitazione sulle varie metodiche in fase di eluizione di un campione

    Procedimento per stabilizzare una colonna ed identificazione delle varie colonne su un modulo HPLC

    Dimostrazione e funzionamento di un LC-MS/MS

    Estrazione di un campione per analisi in LC-MS/MS

    Valutazione di una curva di calibrazione di analisi in LC-MS/MS

    IMMUNOEMATOLOGIA

    Gruppo sanguigno su adulti

    Gruppo sanguigno + TCD su neonati

    Esecuzione fenotipo Rh

    Esecuzione test di ricerca “D” debole

    Test di Coombs diretto/frazionato

    Test di Coombs indiretto

    Ricerca ed identificazione anticorpi antieritrocitari

    Eluizione di autoanticorpi

    L’automazione in immunoematologia;

    Ruolo ed attività di un TSLB in un SIT

    Emovigilanza e sicurezza

    Reazioni avverse

    Cross match eritrocitari

     

     

    PREREQUISITI

    Aver frequentato e superato le ore di tirocinio del I e II anno e relativo esame. Aver superato tutti gli esami del I anno e tutti gli esami del II anno tranne un C.I. non propedeutico come da regolamento didattico.

    MODALITA' DIDATTICHE

    Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio di base con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.

    PROGRAMMA/CONTENUTO

    Il programma è stato esplicato nella voce "OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO)

    DOCENTI E COMMISSIONI

    Commissione d'esame

    CRISTINA CUSATO (Presidente)

    ALESSANDRA SIGNORETTI (Presidente)

    NICOLA TRAVERSO (Presidente)

    LEZIONI

    INIZIO LEZIONI

    Il percorso di tirocinio pratico ha inizio dopo la fine delle Lezioni del I semestre dal mese di Gennaio  al mese di Febbraio e dopo le lezioni del II semestre dal mese di Aprile-Maggio al mese di  Settembre con una pausa nel mese di Agosto

    Orari delle lezioni

    TIROCINIO III ANNO

    ESAMI

    MODALITA' D'ESAME

    Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con decrizione delle modalità di svolgimento e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico -diagnostico

    MODALITA' DI ACCERTAMENTO

    L'esame ha luogo alla fine dell'espletamento del tirocinio annuale. Lo studente deve dimostrare di aver acquisito gli obiettivi previsti.

    Calendario appelli

    Data Ora Luogo Tipologia Note
    25/02/2022 14:30 GENOVA Laboratorio Laboratorio Didattico DISC Anatomia Patologica II piano
    25/02/2022 14:30 GENOVA Laboratorio Laboratorio Didattico DISC Anatomia Patologica II piano