CODICE | 70732 |
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ANNO ACCADEMICO | 2021/2022 |
CFU |
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SETTORE SCIENTIFICO DISCIPLINARE | MED/46 |
LINGUA | Italiano |
SEDE |
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PROPEDEUTICITA |
Propedeuticità in ingresso
Per sostenere l’esame di questo insegnamento è necessario aver sostenuto i seguenti esami:
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MODULI | Questo insegnamento è composto da: |
MATERIALE DIDATTICO | AULAWEB |
Il percorso di tirocinio del III anno di corso prevede 560 di attività dello studente presso Laboratori di Aziende Ospedaliere o ASL convenzionate con l'Università in settori specialistici della Medicina di Laboratorio al fine di acquisire competenze con l'attività puramente pratica prevista dal profilo del Tecnico di Laboratorio Biomedico. Il percorso di tirocinio è suddiviso per settori specifici in periodi che prevedono da due a cinque settimane di permanenza.
Acquisire conoscenze e abilità pratiche legate a tecniche di biologia molecolare, tecniche immunoematologiche, immunoistochimche, cromatografiche e citofluorimetriche.
ANATOMIA PATOLOGICA – tecniche immunoistochimiche
Cenni su tecniche immunoistochimiche |
Trattamento preparatorio del materiale per esami immuno-istochimici |
Tecniche immunoistochimiche di base (manuali, semi-automatiche e automatiche) |
Principali markers in immuno-istochimica (lettura data-sheet, diluizione ottimale anticorpo nuovo, ecc) |
Utilizzo dei controlli positivo e negativo |
Preparazione tamponi |
Manutenzione e gestione strumenti |
Smaltimento rifiuti |
Immuno-istochimica su materiale citologico |
Allestimento preparati per diagnostica estemporanea- Colorazioni di elezione per esami intraoperatori - Allestimento di citologici per esame intraoperatorio |
ANATOMIA PATOLOGICA – tecniche immunocitochimiche
Cenni su tecniche immunocitochimiche |
Accettazione ed allestimento di campioni per esami immuno-citochimici |
Separazione cellulare su gradiente di densità |
Tecniche di inclusione per materiale citologico |
Tecniche immunocitochimiche di base (manuali, semi-automatiche e automatiche) |
Markers in immuno-citochimica (lettura data-sheet, diluizione ottimale anticorpo nuovo, ecc) |
Utilizzo dei controlli positivo e negativo |
Preparazione tamponi |
Manutenzione e gestione strumenti |
Utilizzo DPI collettivi ed individuali |
Cenni sulle biobanche |
Smaltimento rifiuti |
TECNICHE DI BIOLOGIA MOLECOLARE
Organizzazione aree e norme comportamentali nel laboratorio di biologia molecolare |
Accettazione stoccaggio e conservazione del campione biologico, programmi di lavoro |
Estrazione acidi nucleici con metodiche manuali ed automatiche in uso nel laboratorio |
Dosaggio e valutazione qualità acidi nucleici |
Tecniche di PCR, |
GEL elettroforesi |
Sequenziamento |
Interpretazione risultati |
Manutenzione e uso strumenti di laboratorio |
Controlli di qualità CQI e VEQ |
CITOFLUORIMETRIA
Conoscenza delle basi fisiche e tecnologiche della citometria a flusso: |
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Tecniche di colorazione diretta e indiretta di campioni biologici |
Principali metodologie applicative per lo studio del fenotipo e delle funzioni linfocitarie, quali produzione di citochine e proliferazione |
HPLC e LC-MS/MS
Dimostrazione e caratteristiche del funzionamento dei moduli di un HPLC |
Estrazione di un campione su colonna di resina |
La raccolta delle urine delle 24 h acidificate per esami specifici di cromatografia |
Utilizzo delle S.I. in diverse metodiche |
Lettura di un cromatogramma e eventuali modifiche sulla ritenzione dei tempi di uscita dei picchi |
Intervento sul programma di lettura per evidenziare e riconoscere le varie operazioni affinchè venga riconosciuta una sostanza in fase analitica |
Esercitazione sulle varie metodiche in fase di eluizione di un campione |
Procedimento per stabilizzare una colonna ed identificazione delle varie colonne su un modulo HPLC |
Dimostrazione e funzionamento di un LC-MS/MS |
Estrazione di un campione per analisi in LC-MS/MS |
Valutazione di una curva di calibrazione di analisi in LC-MS/MS |
IMMUNOEMATOLOGIA
Gruppo sanguigno su adulti |
Gruppo sanguigno + TCD su neonati |
Esecuzione fenotipo Rh |
Esecuzione test di ricerca “D” debole |
Test di Coombs diretto/frazionato |
Test di Coombs indiretto |
Ricerca ed identificazione anticorpi antieritrocitari |
Eluizione di autoanticorpi |
L’automazione in immunoematologia; |
Ruolo ed attività di un TSLB in un SIT |
Emovigilanza e sicurezza |
Reazioni avverse |
Cross match eritrocitari |
Aver frequentato e superato le ore di tirocinio del I e II anno e relativo esame. Aver superato tutti gli esami del I anno e tutti gli esami del II anno tranne un C.I. non propedeutico come da regolamento didattico.
Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio di base con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.
Il programma è stato esplicato nella voce "OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO)
Ricevimento: Su appuntamento DISC Anatomia Patologica via De Toni 14 Ufficio Coordinatore del Tirocinio a.signoretti@edu.unige.it
CRISTINA CUSATO (Presidente)
ALESSANDRA SIGNORETTI (Presidente)
NICOLA TRAVERSO (Presidente)
Il percorso di tirocinio pratico ha inizio dopo la fine delle Lezioni del I semestre dal mese di Gennaio al mese di Febbraio e dopo le lezioni del II semestre dal mese di Aprile-Maggio al mese di Settembre con una pausa nel mese di Agosto
Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con decrizione delle modalità di svolgimento e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico -diagnostico
L'esame ha luogo alla fine dell'espletamento del tirocinio annuale. Lo studente deve dimostrare di aver acquisito gli obiettivi previsti.
Data | Ora | Luogo | Tipologia | Note |
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25/02/2022 | 14:30 | GENOVA | Laboratorio | Laboratorio Didattico DISC Anatomia Patologica II piano |
25/02/2022 | 14:30 | GENOVA | Laboratorio | Laboratorio Didattico DISC Anatomia Patologica II piano |