OBIETTIVI E CONTENUTI

OBIETTIVI FORMATIVI (DETTAGLIO) E RISULTATI DI APPRENDIMENTO

Il  tirocinio del II anno di corso prevede 575 ore di attività dello studente presso Laboratori specialistici al fine di acquisire  competenze con l'attività puramente pratica prevista dal profilo del Tecnico di Laboratorio Biomedico. Il percorso di tirocinio è suddiviso per settori  in periodi che prevedono da due a cinque settimane di permanenza. Prima  del tirocinio professionalizzante gli studenti devono acquisire 1 CFU di  laboratorio propedeutico al tirocinio  con presenza obbligatoria.

Acquisire conoscenze e abilità pratiche legate a tecniche di chimica clinica, microbiologia, immunometria, batteriologia, micobatteriologia, istologia e citologia.

MODALITA' DIDATTICHE

Attività di apprendimento delle tecniche di Laboratorio specialistiche con frequenza obbligatoria del 100% delle ore pianificate dei Laboratori e apprendimento diretto attraverso l'utilizzo di strumentazioni con la guida di professionisti appartenenti allo stesso Profilo Professionale. Non sono previste ore di studio individuale.

PROGRAMMA/CONTENUTO

Settore chimica-clinica 70 h:

• Caratteristiche del siero, plasma, anticoagulanti ed esercitazione pratica sul trattamento di tali materiali biologici
• Caratteristiche e funzionamento delle apparecchiature automatizzate per determinazioni di chimica clinica con esercitazione pratica
• Calibrazioni e Verifica quotidiana di qualità (QC)
• Manutenzione ordinaria e straordinaria apparecchiature
• Dimostrazione dei criteri di validazione tecnica dei valori ottenuti, visualizzazione delle carte di controllo di qualità, delle metodiche e della linearità delle reazioni sugli analizzatori

Settore elettroforesi 70 h:

• Esecuzione dell’elettroforesi delle sieroproteine con metodo Capillarys in fase liquida.
• Acquisizione del principio di funzionamento delle apparecchiature, preparazione dei reattivi e controlli di qualità
• Visualizzazione dei tracciati elettroforetici serici, normali e patologici
• Esecuzione dell’elettroforesi zonale delle urine su gel di agarosio
• Preparazione ed utilizzo di tampone e colorante per elettroforesi su gel
• Dimostrazione delle metodiche di immunofissazione serica e/o urinaria
• Dosaggio delle proteine con metodo nefelometrico . Preparazione dei reagenti, calibrazioni,controlli di qualità e validazione dei risultati

Settore immunometria 70 h:

• Conoscenza delle principali ricerche immunometriche
• Acquisizione delle principali tecniche applicate in immunometria
• L’automazione in immunometria, uso di questa nella routine giornaliera
• Importanza dell’accuratezza del dato trattato in funzione del controllo/calibrazione eseguiti  sulle apparecchiature in uso
• Rilevazione e trattamento dei dati ottenuti dalle analisi, gestione autonoma dei risultati con conseguente sviluppo delle metodiche di controllo e/o conferma
• Interpretazione dei dati ottenuti
• L’errore in immunometria: causa, trattamento e rimedio

Settore microbiologia  175 h:

• Acquisizione di tecniche di laboratorio di batteriologia: ambienti, camici, guanti monouso, occhiali e mascherina per manipolazioni particolari
• Contenitori, raccolta , trasporto, accettazione e diritto di rifiuto del campione smistamento del campione
• Terreni di cultura: solidi, liquidi,  arricchiti, selettivi, differenziali
• Protocolli di semina dei materiali
• Interpretazione delle crescite sulle piastre in relazione ai materiali seminati
• Protocolli per identificazione ed antibiogramma
• Morfologia delle colonie e reisolamento su terreni selettivi
• Preparazione dei vetrini e colorazioni: Gram, Ziel Nilsen, Blu di metilene,inchiostro di china
• Identificazione manuali ed automatiche ,significato di bionumero ed index identificazioni sierologiche 
• Antibiogramma manuale  e con l’uso di sistemi automatici, MIC , Etest
• Germi anaerobi: coltura in atmosfera priva di ossigeno, identificazione
• Micologia lieviti e forme miceliali aeree riconoscimento
• Protezione e sicurezza nelle culture per Micobatteri
• Decontaminazione dei campioni e semina in terreni solidi e liquidi
• Tecniche di amplificazione genica

Settore anatomia patologica  175 h:

• Registrazione e schedatura del materiale
• Conservazione e fissazione del materiale
• Campionatura
• Tecniche di inclusione in paraffina
• Tecniche di taglio
• Preparazioni citologiche per citologia esfoliativa
• Preparazioni citologiche di liquidi
• Colorazioni istologiche di base

TESTI/BIBLIOGRAFIA

Nessuno

DOCENTI E COMMISSIONI

Commissione d'esame

CRISTINA CUSATO (Presidente)

SILVIA NASO (Presidente)

NICOLA TRAVERSO (Presidente)

ALESSANDRA SIGNORETTI (Presidente e Coordinatore di corso integrato)

LEZIONI

INIZIO LEZIONI

Dal mese di dicembre fino a fine settembre tranne che nel periodo delle lezioni

ESAMI

MODALITA' D'ESAME

Al termine del percorso di tirocinio curriculare con esito positivo lo studente dovrà sostenere l'esame di tirocinio annuale nel mese di settembre con l'esecuzione di test di laboratorio.

L’esame si svolgerà presso il laboratorio didattico sulle competenze acquisite durante il laboratorio propedeutico e il tirocinio curriculare.

MODALITA' DI ACCERTAMENTO

Verifica delle capacità di esecuzione di test di Laboratorio con descrizione delle tecniche utilizzate e delle finalità del test per accertamenti di tipo clinico –diagnostico

ALTRE INFORMAZIONI

Gli studenti potranno richiedere informazioni e supporto al Coordinatore del Tirocinio e ai Tutor Clinici