Conoscere tecniche laboratoristiche delle tecniche elettroforetiche delle sieroproteine e delle urine; produzione dei radiofarmaci attraverso l'utilizzo l'utilizzo di un acceleratore circolare di particelle (ciclotrone); produzione dell'isotopo richiesto, invio del materiale al modulo di sintesi, preparazione del radiofarmaco, esecuzione dei controlli di qualità per il rilascio del radiofarmaco (iniettabilità per l'esecuzione della PET; Il corso Tecniche di Immunometria si prefigge di descrivere le principali modalità tecniche utilizzate per l’esecuzione di test di immunometria sia con metodologia manuale che con strumenti automatici. Vengono inoltre illustrate le tecniche di diluizione maggiormente usate in laboratorio di analisi
Tecniche di Chimica Clinica
Tecniche elettroforetiche
Lezioni frontali in aula con proiezione di materiale didattico in formato elettronico che viene reso disponibile in Aula Web
1. Introduzione al Laboratorio: definizione di fase pre-analitica, prelievo e criteri di non accettabilità del campione; tipologia dei campioni; anticoagulanti; trattamento, trasporto, centrifugazione e conservazione.
2. Tecniche analitiche strumentali: caratteristiche della luce, interazione tra materia ed energia radiante, Legge di Lambert e Beer, assorbanza e curva di taratura, azzeramento contro bianco; generalità su fotometria e spettrofotometria; spettrofotometria ad un raggio, a doppio raggio; turbidimetria; nefelometria.
3. Applicazioni cliniche: spettrofotometria con metodi diretti, indiretti; reazioni colorimetriche; reazioni enzimatiche, reazioni primarie e reazioni accoppiate, reazioni enzimatiche NAD e NADP dipendenti; reazioni enzimatico-colorimetriche, metodo Trinder end point.
4. Potenziometria indiretta: principio del metodo.
5. Metodi di determinazione dei principali parametri dosati in chimica clinica (AST, ALT, gGT, PCE e numero di dibucaina, LDH, Bilirubina totale e diretta, CPK, ALP, Amilasi totale e Pancreatica, Lipasi, Urea e Azoto Ureico, Creatinina, Acido Urico, calcolo della clearance endogena, Ferro, Ferritina, Glucosio, Colesterolo totale, HDL e LDL, Trigliceridi, APO A e B, Sodio, Potassio, Cloro, Calcio, Fosforo, Magnesio): Metodiche, interpretazione del dato clinico ed interferenze.
6. Qualità del sistema analitico: precisione ed accuratezza del dato analitico; specificità e sensibilità di un metodo; tipologia di errori; calibrazioni: definizione di limite di rivelabilità e sensibilità; controllo di qualità interno, controllo di qualità esterno; diluizioni.
Elettroforesi e Proteine specifiche• materiali biologici e raccolta. Proteine • caratteristiche generali • struttura (cenno) • funzioni • metodi di determinazione • Strumentazione automatica presente nel settore (Funzionamento). Separazione elettroforetica delle sieroproteine• Profilo elettroforetico standard • Frazioni (albumina-α1-α2-β1-β2-γ) • Proteine specifiche riscontrabili nel tracciato elettroforetico. Gammapatie. Immunofissazione elettroforetica (IFE): principi del metodo • Metodica • Interpretazione del risultato. Valutazione di tracciati normali e patologici. Elettroforesi Urinaria. Ricerca della proteina di Bence Jones • Metodica • Interpretazione del risultato • Immunosottrazione e interpretazione del risultato. Tecniche Elettroforetiche • Definizione di elettroforesi: principio, apparecchiature e accessori (alimentatore, camera elettroforetica, tampone, colorante, densitometro) • La migrazione e fattori che la influenzano (Differenza potenziale, forza frizionale, velocità di migrazione, mobilità elettroforetica; Campione; Soluzione tampone; Forza ionica; Effetto Joule; Elettroendosmosi) • Metodi di esecuzione: Fase libera o frontale; su supporto setacciante e non setacciante o zonale • Elettroforesi zonale delle sieroproteine su carta, acetato di cellulosa, gel d’agarosio e in capillare • Metodiche • Interpretazione della migrazione e dei grafici in capillare • Valutazione di quadri normali e patologici • Metodi a confronto.
Ricevimento: Dipartimento di Medicina Interna e Specialità Mediche Laboratorio di Bioterapie IRCCS Policlinico Ospedale San Martino IST-NORD 2°piano Torre C Tel: 010-5558203. Email: maddalena.mastrogiacomo@unige.it
Ricevimento: Il colloquio potrà essere richiesto via mail o telefonicamente daniela.fenoglio@unige.it – telefono 010/3533027-3029 Studio Dott.ssa Daniela Fenoglio, presso la Direzione del Centro di Eccellenza per la Ricerca Biomedica (CEBR)- Viale Benedetto XV, 7 -16132 Genova
Ricevimento: Dipartimento Ricerca Traslazionale, Medicina di Laboratorio Diagnostica e Servizi U.O.C Laboratorio di Analisi IRCCS Istituto Giannina Gaslini5, 16147 Genova Tel: 01056362834 E-mail elisabettafraternale@gaslini.org
MARIO PASSALACQUA (Presidente)
ELISABETTA FRATERNALE
MADDALENA MASTROGIACOMO
MAURIZIO BRUSCHI (Presidente e Coordinatore di corso integrato)
Consultare orario dettagliato al seguente link: https://easyacademy.unige.it/portalestudenti/
Si rimanda all'istanza AulaWeb specifica dell'insegnamento per eventuali aggiornamenti a causa di variazioni della situazione sanitaria ed epidemiologica
TECNICHE CHIMICHE CLINICHE
Test a risposta multipla per la valutazione delle conoscenze acquisite nei moduli di biochimica clinica, tecniche chimiche, elettroforetiche e radioimmunologiche; il modulo di biochimica generale prevede invece un esame orale. Il voto finale è la media pesata del risultato ottenuto nei vari moduli; tutte le parti vanno superate con almeno 18/30.
un questionario a risposta multipla verificherà il raggiungimento degli obiettivi formativi dei vari moduli
